→ xxtomnyxx: 我猜你的藥物會留在細胞內並影響PI染色的螢光06/22 17:45
目前也不清楚,但確實由其他實驗推測會影響DNA replication。
推 cjsntu: 直接調整加藥組的G0/G1 peak回到跟control一樣的位置 不過06/22 20:04
→ cjsntu: 要看老闆 有的老師可以接受有的就不行06/22 20:04
感謝回覆。調整peak可能不太行,因為如果範圍比較小,例如S-phase怕會有誤差,老闆
可能不接受。另外就是如果是多濃度/多組別,若每個都要手動,同時得紀錄百分比,這
個做法可能不切實際。
※ 編輯: maurice9325 (49.216.131.178 臺灣), 06/22/2022 21:03:05
※ 編輯: maurice9325 (49.216.131.178 臺灣), 06/22/2022 21:04:27
→ xxtomnyxx: Peak shift 的程度有和給予的藥物濃度正相關嗎?06/22 22:06
看不出正相關,只知道一定濃度以上即會導致shift。有懷疑過是否與藥物處理後pheboty
pe改變所以導致shift,但無法確定。
推 bahrimank: 如果以螢光強度,手動定義G0/G1;S;G2 phase呢?06/22 23:40
有想過,但如同上述,如果每次實驗組別太多,會花太多時間在後端分析與記錄。且曾經
遇過reviewer挑戰,以此方法不夠客觀,調整不同組別參數以分析自己想要的data也不符
合flow的精神。
推 MartianIT: 藥物的MOA是?06/23 00:27
因為是新藥開發與測試,所以沒有結論。目前就知道會影響DNA的function,如上述DNA r
eplication;而最後一定可以想像細胞就是死了。
另外回覆我們曾經有與專員討論過,例如:
前段的部分,固定細胞數量後再fix and staining但無效。
或上機時以不同電壓微調再收data,但此方法同收完以後再調整有相同的問題,就是一樣
組別太多無法操作且不太客觀。
或是輸出raw image利用第三方軟體把shift的位置拉回來疊一起,再進行area的計算,但
我目前沒有找到相關軟體可以分析。
所以想請問是否有大大有類似的分析經驗、或方法上的改善。謝謝。
※ 編輯: maurice9325 (49.216.131.178 臺灣), 06/23/2022 07:51:21
→ xxtomnyxx: 既然知道會影響 DNA function,合理假設他會與 DNA 結 06/23 11:37
→ xxtomnyxx: 合,藥物分子經常有很多環可以共振,也就有可能會有螢 06/23 11:38
→ xxtomnyxx: 光的性質,我會猜訊號會偏移應該是藥物分子的影響,試06/23 11:39
→ xxtomnyxx: 試看換其他種 cell cycle analysis 染劑,或者是在 fix 06/23 11:40
→ xxtomnyxx: 後染 PI 前將所有組別的細胞都用藥物處理讓他們都有相 06/23 11:41
→ xxtomnyxx: 同的偏移看看(不過藥物如果量少又貴就不能這樣用) 06/23 11:42
推 darrenyo: 試試看DAPI或hoechst? 還可以不用加RNase06/23 12:51
推 cjsntu: 突然想到PI用到80-100 ug/mL peak shift狀況會好很多 我 06/23 21:57
→ cjsntu: 碩班也遇到類似的困擾過 濃度調整之後就有比較好 06/23 21:57
好的,感謝諸位,我會試試看。另若有其他大大另有不同處理/分析方法,仍請不吝提供
。謝謝。
※ 編輯: maurice9325 (49.216.131.178 臺灣), 06/24/2022 10:04:41
推 hkaiwei: 要注意每組染色細胞數有沒有因為藥物處理而改變,會影響 07/29 18:26
→ hkaiwei: 最後PI的強度 07/29 18:26