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請問使用western blot偵測phosphorylated protein kinase時 每次跑出來的結果很不穩定,有時候可以看到磷酸化現象,有時候又看不到 不知道是在那個步驟出了差錯? ============================================================================= 自己覺得可能發生問題的地方 [1] lysis buffer成份 我所用的RIPA buffer為(50mM Tris-HCl, 150mM NaCl, 0.5mM EDTA, 1mM DTT, 1% NP-40, 0.5% Sodium Deoxycholate,0.1% SDS) 使用前外加 protease inhibitor和phosphotase inhibitor 這個配方是kinase activity assay kit裡面裡面建議的RIPA配方 但是又有看到有資料上寫說進行kinase assay時不可加入Sodium Deoxycholate 不知道是不是我加了什麼不該加的東西呢? [2] SDS干擾 會不會因為SDS-PAGE裡面的SDS把所有蛋白都加上了負電, 如果要看的蛋白分子量太大,多了一個磷酸根跟沒有多磷酸根,將無法被分辨 我要看的蛋白是Src kinase(~60kDa)和ERK(~42kDa) 這兩種蛋白需要跑non-denature gel嗎? 查paper作磷酸化很多人也是用SDS-PGAE在跑 [3] 溫度影響 收完cell lysate後,每100ul加入2.5ul的β-mercaptoethenol,100℃煮10 min 每次要跑膠前再煮100℃ 2 min 這樣會boiling過頭嗎? 莫非磷酸跟會煮一煮就掉下來嗎XD 我是實驗室第一個作磷酸化實驗的 作了好幾個月都一直這樣若有似無 不知道一般作磷酸化還有哪些地方是影響結果關鍵的步驟 想請各位有經驗的學長姐提供我可以改善的地方 謝謝各位^^ -- ※ 發信站: 批踢踢實業坊(ptt.cc) ◆ From: 140.116.48.94
aggaci:你blocking用BSA還是牛奶? 04/16 20:56
fodo:用NET buffer(含NaCl, Tris-HCl, EDTA, gelatin, Tween20) 04/16 21:48