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不好意思 有幾個問題想請教一下各位大大 小弟最近在用流式細胞儀看細胞死亡途徑時遇到了一些問題 我的實驗是用光動力治療在細胞體內產生自由基來殺死Hela cell 實驗的設計是在照光後6 hr/24 hr收集起來 染完Annexin V-FITC/PI之後去跑flow來判斷細胞的死亡途徑 但是因為flow儀器預約時段的關係 我是把照光後6hr的細胞在染色完之後fix起來 保存到隔天把24hr的細胞染完之後再一起拿去跑 結果在用positive control(這組也是前一天染的)抓gate的時候發現 不管是單染FITC或是雙染的組別都看不到FITC的訊號 而單染PI與雙染的組別則都抓的到PI的訊號 這應該代表我positive control的作法沒有問題? (kit裡的protocol是說把細胞泡在3.7% formaldehyde裡面冰浴30min) 如果protocol沒問題的話 只看的到PI 沒有FITC是很怪的一件事 我有問過實驗室學長 他是說FITC染完之後放到隔天太久 這樣訊號會變很弱 他建議先fix起來隔天要上機之前再染 這邊我有個問題 如果先fix的話 膜的結構會不會受到影響? 我們fix都是用3.7% formaldehyde固定20分鐘 而positive control也是用formaldehyde做 而且已經證實染的到PI 這樣不就代表膜已經受損到足以讓PI通過了嗎? 這樣先fix再染會不會讓普通的正常細胞也變成FITC+/PI+? 我們學長是說他沒染過apoptosis 他不知道這樣會不會有影響 如果會有影響的話 以各位的經驗FITC在染色完畢之後避光4度C保存大概能撐幾小時呢? 另外 細胞凋亡在啟動6小時後 應該仍是會處在早期膜外翻的狀態嗎? 我查過一些光動力治療相關的paper 有的抓照光後5小時後觀察 有的抓6小時後觀察 不曉得抓6小時這個時間點O不OK? 問題有點多 麻煩大家了 -- ※ 發信站: 批踢踢實業坊(ptt.cc) ◆ From: 140.112.182.185
qiet:你的fixation buffer是用binding buffer稀釋嗎? 03/07 21:24
qiet:要是沒有Ca+ annexin V可能就掉了 自然就看不到螢光 03/07 21:25
qiet:FITC不會掉的那麼快, 放一兩天應該都測的到 03/07 21:26
grox:Fix完不就全掛了嗎...? 當時是收下來直接加Annexin V染 03/08 08:34
grox:我是用BD的 03/08 08:37
qiet:要先染好再固定就可以了 03/08 12:40
sss79818:感謝樓上二位 我想我找到原因了 我們LAB的fix buffer 03/08 16:15
sss79818:裡面並沒有Ca+ 03/08 16:16
sss79818:如果我加點CaCl2把它配成裡面有Ca+2.5mM再fix應該就OK 03/08 16:19
sss79818:了吧? binding buffer裡的濃度也差不多是這樣 03/08 16:19