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請問各位以pfu做PCR時如果一直做不出來有那些地方要注意的 total 25 ul temp(cDNA) 5 ul 為1.8Kb的基因從yeast來的cDNA 10x buffer 2.5ul dNTP(2.5mM) 4 ul PRIMER(10pMOL)F 1 ul R 1 ul pfu (2.5U/ul) 0.5ul +H2O至25ul 時間: 1 95 5min 2 95 1min 3 56 1min 4 72 2min (35 cycle) 5 72 12min 做了粉多的不同嘗試一直做不出來但用 Taq做的出來(到65度都可以) -- ※ Origin: 生命科學 BBS <bbs.life.nthu.edu.tw> ◆ From: 140.109.40.90 > -------------------------------------------------------------------------- < 發信人: Maveric.bbs@bbs.csmc.edu.tw (AlfaFan), 看板: Biology 標 題: Re: 用pfu做PCR的問題 發信站: 中山醫學院BBS站 (Sun Sep 24 21:48:59 2000) 轉信站: Ptt!news.ntu!news.mcu!news.cs.nthu!news.cis.nctu!csmcbbs 【 在 albertwang.bbs@bbs.life.nthu.edu.tw (會思考的魚) 的大作中提到: 】 : 請問各位以pfu做PCR時如果一直做不出來有那些地方要注意的 : total 25 ul : temp(cDNA) 5 ul 為1.8Kb的基因從yeast來的cDNA template為多少mole? 無法從你寫的體積中知道DNA濃度. 濃度偏高也不利 反應的進行! : 10x buffer 2.5ul : dNTP(2.5mM) 4 ul dNTP一般是用250uM (final concentration), dNTP太多反而不利反應. : PRIMER(10pMOL)F 1 ul : R 1 ul primer放到10 pmol太多了, 雖不會影響反應但嫌浪費. : pfu (2.5U/ul) 0.5ul : +H2O至25ul : 時間: : 1 95 5min : 2 95 1min : 3 56 1min : 4 72 2min (35 cycle) : 5 72 12min : 做了粉多的不同嘗試一直做不出來但用 Taq做的出來(到65度都可以) 我想還有一可能是template不乾淨. 特別是從agarose gel回收的DNA. 如果你用的agarose不是頂級的(e.g., FMC GTG grade), 那gel所含的一些硫酸根 離子偏高, 而傳統回收法是去不掉這些離子的. 所以我建議你用一些kit (如 Qiagen的gel pudification kit)做回收再試試看. > -------------------------------------------------------------------------- < 發信人: wheels.bbs@bbs.ntu.edu.tw (做完實驗吃早餐), 看板: Biology 標 題: Re: 用pfu做PCR的問題 發信站: 台大計中椰林風情站 (Mon Sep 25 10:23:46 2000) 轉信站: Ptt!news.ntu!bbs.ee.ntu!Palmarama 如果你是要做cloning, taq又可以用就用taq做就可以了, 其實挑到的clone有mutation的比率相當的低, 如果你還是擔心,可以用其他家的試試像takara..... 我以前聽到的與你相反,pfu可以,taq不可以。 還有,你的template太濃了。 我聽到隔壁實驗室拿我抽的cDNA做cloning, 勢將0.6ug/ul的DNA dilute 100取1 ul做, 就可以了。 ==> albertwang.bbs@bbs.life.nthu.edu.tw (會思考的魚) 提到: > 請問各位以pfu做PCR時如果一直做不出來有那些地方要注意的 > total 25 ul > temp(cDNA) 5 ul 為1.8Kb的基因從yeast來的cDNA > 10x buffer 2.5ul > dNTP(2.5mM) 4 ul > PRIMER(10pMOL)F 1 ul > R 1 ul > pfu (2.5U/ul) 0.5ul > +H2O至25ul > 時間: > 1 95 5min > 2 95 1min > 3 56 1min > 4 72 2min (35 cycle) > 5 72 12min > 做了粉多的不同嘗試一直做不出來但用 Taq做的出來(到65度都可以) > -------------------------------------------------------------------------- < 發信人: albertwang.bbs@bbs.life.nthu.edu.tw (會思考的魚), 看板: Biology 標 題: Re: 用pfu做PCR的問題 發信站: 清華生命科學 BBS (Mon Sep 25 22:15:37 2000) 轉信站: Ptt!news.ntu!news.mcu!news.cs.nthu!news.nthu!nthuls > : temp(cDNA) 5 ul 為1.8Kb的基因從yeast來的cDNA > template為多少mole? 無法從你寫的體積中知道DNA濃度. 濃度偏高也不利 > 反應的進行! 嗯我是沒測過 > : 10x buffer 2.5ul > : dNTP(2.5mM) 4 ul > dNTP一般是用250uM (final concentration), dNTP太多反而不利反應. > : PRIMER(10pMOL)F 1 ul > : R 1 ul > primer放到10 pmol太多了, 雖不會影響反應但嫌浪費. > : 真的啊這還太多啊那個場商的目錄寫的比這還要濃說 那我用少一點試試 pfu (2.5U/ul) 0.5ul > : +H2O至25ul > : 時間: > : 做了粉多的不同嘗試一直做不出來但用 Taq做的出來(到65度都可以) > 我想還有一可能是template不乾淨. 特別是從agarose gel回收的DNA. > 如果你用的agarose不是頂級的(e.g., FMC GTG grade), 那gel所含的一些硫酸根 > 離子偏高, 而傳統回收法是去不掉這些離子的. 所以我建議你用一些kit (如 > Qiagen的gel pudification kit)做回收再試試看. 喔我的cDNA是從YEAST抽取來的mRNA直接做cDNA > -------------------------------------------------------------------------- < 發信人: mrsa.bbs@bbs.ntu.edu.tw (), 看板: Biology 標 題: Re: 用pfu做PCR的問題 發信站: 台大計中椰林風情站 (Tue Sep 26 10:10:09 2000) 轉信站: Ptt!news.ntu!bbs.ee.ntu!Palmarama 不知道你的buffer裡有沒有Mg++ 你可以試試看加多一點鎂離子(建議量的2-3倍) 我的pfu PCR 就是這樣做出來的 Good luck ==> albertwang.bbs@bbs.life.nthu.edu.tw (會思考的魚) 提到: > 請問各位以pfu做PCR時如果一直做不出來有那些地方要注意的 > total 25 ul > temp(cDNA) 5 ul 為1.8Kb的基因從yeast來的cDNA > 10x buffer 2.5ul > dNTP(2.5mM) 4 ul > PRIMER(10pMOL)F 1 ul > R 1 ul > pfu (2.5U/ul) 0.5ul > +H2O至25ul > 時間: > 1 95 5min > 2 95 1min > 3 56 1min > 4 72 2min (35 cycle) > 5 72 12min > 做了粉多的不同嘗試一直做不出來但用 Taq做的出來(到65度都可以) > -------------------------------------------------------------------------- < 發信人: Maveric.bbs@bbs.csmc.edu.tw (AlfaFan), 看板: Biology 標 題: Re: 用pfu做PCR的問題 發信站: 中山醫學院BBS站 (Tue Sep 26 16:10:21 2000) 轉信站: Ptt!news.ntu!news.mcu!news.cs.nthu!news.cis.nctu!csmcbbs 【 在 albertwang.bbs@bbs.life.nthu.edu.tw (會思考的魚) 的大作中提到: 】 : 嗯我是沒測過 : 那我用少一點試試 我的primer用量最多不超過5 pmol, 通常放3 pmol, 如果有32P標定則1.5 pmol就 很多了! : pfu (2.5U/ul) 0.5ul : 喔我的cDNA是從YEAST抽取來的mRNA直接做cDNA OK, 看到這裡知道你的cDNA是從RT過來的. 所以首要工作是 驗證RT沒問題. -->用另一組已知的primer做RT及PCR當internal control. 同時, template取5 ul, 換句話說PCR的buffer已不是原始的1X buffer, 故有必要 算一下目前buffer中的pH值, 離子濃度等. 雖說DNA pol.的活性與Mg++有密切關係, 但Na+, K+也會影響 (主要是ionic strength, 影響protein conformation). 可以先取少一點RT產物試看看 (或經dilute). 如果還是不行, 只好再純化RT產物. 我 都是用Qiagen的nucleotide removing kit, 方便且回收率高.