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如果是一般的immunostain 我們做的方式大概是: 例如使用貼附性的細胞 1. 準備3cm culture dish (或是12well盤也差不多只要可以容cover slide即可) 和蓋玻片cover slide (小小正方形那種) 2.在culture laminar flow 無菌操作台中 將一片cover slide 放入 一個dish或well中 3. 用100%EtOH wash 一次 即加入稍微沖洗 再吸出 4.在laminar flow 中風乾 及照UV 可放數小時或隔夜 5.將你要觀察的細胞 seeding種入 即加在已準備好的dish/slide上面 如貼附性細胞 培養隔夜 讓其貼在slide上面 6.將貼附好的細胞 拿出 吸掉medium 小心不要吸得太乾 避免細胞變形 7.加入固定buffer 可以參考paper 選用 我們是用3.7% formaldehyde in PBS or TBS/EDTA 此步驟可以放15min~數小時 8.吸掉固定buffer 加入permeablization buffer 將細胞打洞用 靜置1 min 3.7% formaldehyde 2% Triton-X 100 in PBS or TBS/EDTA 9. 吸掉buffer 加入2% albumin in PBS or TBS/EDTA (如Western blocking的意思) 這步驟可放4度C冰箱 隔夜 注意不能讓細胞乾掉 到此 細胞算是處理好準備染色 10.吸乾buffer 加入你要染色的抗體 就像Western blot染1抗 先將抗體加入 2% albumin in PBS or TBS/EDTA 再均分到不同dish中 可以放4度C 4~5小時 每個小時可以拿出來稍微搖晃 注意不要乾掉 11.可用PBS or TBS/EDTA wash 3次 (例如加入1~2ml 稍微輕輕搖晃再吸出 這樣為一次wash) 12. 可依step 10.方式加入2抗 室溫下 1hr 大概每隔15~20分鐘輕輕搖晃 13. 再wash 1~2次 如要染細胞核 可在此步驟中 加入1~2ul DAPI 靜置1~3分鐘 再wash 1~2次 14.準備鑷子 和針頭 或是方便你挑起 cover slide的工具 最好是乾淨的或用酒精清潔過 準備 載玻片 並標示清楚 15.用pipet 滴 mounting solution 約30~40ul (每一個slide 大概需要的量) 用針頭挑起染色好的slide 夾起cover slide反向蓋在 mountiing solution上面 __________________ cover slide ///////////////// 細胞 _______mounting solution____ 載玻片 16.放37度C 風乾1~2hr 就可以用顯微鏡看了 這樣應該可以對immunostain有點概念吧 希望有幫助摟 -- 我站在靠近天堂的頂端 張開手全部釋放 用月光取暖 給自己力量  才發現關於夢的答案 一直在自己手上 只有自己能 讓自己發光 -- ※ 發信站: 批踢踢實業坊(ptt.cc) ◆ From: 61.223.102.26 ※ 編輯: Seal13 來自: 61.223.102.26 (10/23 21:07)
ccfccf:寫的很用心喔 而且沒有錯別字 有m的潛力 10/23 22:25
cloudy1205:寫的真的好詳細,非常謝謝你^^ 10/24 01:17
greenmoon00:push 10/24 15:11