作者homeshawn (阿孝)
看板Biotech
標題[求救] western membrane保存
時間Fri Apr 24 14:40:32 2015
是這樣的，我這兩天都在做WB，
終於在今天接完二抗也拍完照，
接著我要用拍完照的membrane染internal control (B-actin)，
所以我興沖沖的用striping buffer將membrane的抗體洗掉，
在這個摸門特，我才想到一個問題。
拍攝冷光的設備在其他空間。。。他們假日沒有上班。。。
所以勢必需要把membrane保存過周六周日。。。
我原本是想說泡在PBST冰4度
但是有同事說會讓membrane乾掉，到時候再用methanol活化
(但事前幾天有位不就犧牲在blocking時membrane乾掉太久嗎QQ?)
所以我很疑惑membrane到底能不能讓它乾。。。
請問該如何做比較恰當呢=.=?
煩請指點迷津 謝謝
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※ 編輯: homeshawn (203.71.94.5), 04/24/2015 14:40:50
→ blence: 我是把membrane洗過PBST就直接包保鮮膜丟-20,NC的 04/24 14:49
→ blence: blocking 2天,擔心的不一定是乾掉,反而怕milk會臭掉 04/24 14:50
→ kgwu: 晾乾以後 要用的時候再用甲醇活化 04/24 15:41
→ homeshawn: 了解~ 04/24 15:48
※ 編輯: homeshawn (203.71.94.5), 04/24/2015 16:40:03
推 dota01: 放PBS裡丟冰箱也可以 04/24 18:40
推 qiet: 我們lab要是transfer完沒要立刻加抗體會先晾乾, 在放進乾淨 04/24 20:53
→ qiet: 的袋子或盒子裡冰著 04/24 20:54
推 michealking: 拿盒子裝多ㄧ點pbs 丟冰箱就好 懶人如我常做 04/29 05:52
推 aqzzz: 泡在TBS or TBST可以嗎 04/29 09:56
推 jsi: 乾了再用甲醇活化沒問題，泡在牛奶、PBS、TBS、TBST冰冰箱也 05/01 00:38
→ jsi: 可以，只要別發霉都OK 05/01 00:39