推 tony51501: 我vector濃度都大概1.x ng/ul 06/08 15:45
→ tony51501: 你用的抗生素?盤子抗生素濃度? 06/08 15:45
我是使用kanamycin 30 ug/ml
→ darkdoor: 可以嘗試16度overnight 06/08 15:53
推 elite2: ligase buf.裡面有ATP不要去加熱!效率會變很差 06/08 15:54
→ elite2: 另外,12-16度overnight會比較好~ 06/08 15:55
加熱是老師給的建議,說他以前的做法
好 我會改試試看16度 O/N
→ hitmd: 跟別家做的出的借一下ligase,有時候活性有差 06/08 16:04
LAB其他人也都用同樣的東西做 但是有成功><....
※ 編輯: angel810801 (140.121.155.195), 06/08/2016 17:43:13
推 oceanl: heat shock後有放培養箱recover嗎?有試過把20ul全下嗎? 06/08 17:47
市售的protocol沒有寫放培養箱recover....我下次試試看
因為他是建議加入的DNA量不要超過1%(一管是100ul)
加上之前我們老師也是說最多不能超過5 ul
20 ul 全加不會給勝任細胞太多壓力嗎?
※ 編輯: angel810801 (140.121.155.195), 06/08/2016 17:50:37
→ blence: 同一樓看法,Kan仍建議recover;DNA方面5-10%就好,20太多了 06/08 18:48
→ blence: 不過ligation與其補水,而且才用5ul,不如控制體積10ul以內 06/08 18:51
推 qazbamboo: 我大部分都放室溫一個小時跟勝任細胞10:50 06/08 20:38
推 lail: kan的菌要recovery+1, 然後我以前ligation是在室溫3-4小時( 06/08 21:13
→ lail: 隔壁學姐室溫1小時),給你參考 06/08 21:13
→ Ianthegood: 量多沒好處, ligase一般都建議vector 50ng當基準調整 06/08 21:17
→ skyken10: 跑個膠確認一下ligation的效率! 06/08 22:49
→ blence: 跑膠? 以10^7效率看1ng就有1萬顆了,1ng跑膠看得到? 06/08 23:07
→ blence: transform長起來的DNA量,遠少於跑膠偵測的靈敏度極限阿 06/08 23:11
→ Ice9: 試試ligation完加熱一下,某種程度上可增加transform效率 06/09 04:59
推 aaaazzzz: 先前也遇到ligation完全沒長(kanamycin),後來步驟多了LB 06/09 12:33
→ aaaazzzz: 加入後,置放37度45分鐘就有長了 06/09 12:34
推 joseph103331: 我用Quick ligase, 室溫15分鐘就好了 06/09 15:59
→ joseph103331: 如果vector沒有做切膠分離, 完全沒長肯定是ligase 06/09 16:00
→ joseph103331: 或是沒有recover的關係, 參考產品protocol去做就好, 06/09 16:01
→ joseph103331: 先不要用一些其他的經驗去操作 06/09 16:01
推 tynse71864: recovery +1 ligation 有這步比較好長~ 趕時間大概15 06/09 23:55
→ tynse71864: -20分鐘就行了 06/09 23:55
推 o81628: 學姊我在這(舉手) 06/10 01:21
→ osla30: 不要用cleanup改跑膠切膠純化試試 06/10 01:33
→ osla30: insert與vector以65度加熱5分,冷卻後再加ligase與buffer 06/10 01:41
→ osla30: 試試 06/10 01:41
→ osla30: insert我通常會給多一點 06/10 01:43
推 qumai: 勝任細胞體積多少? 加了5uL ligation product 已經很多了 07/06 13:43
→ qumai: Kna一定要recovery不然效率會很差, heat shock之後加SOC 07/06 13:45
→ qumai: 37度搖一個小時吧, plate也37度C先溫一下 07/06 13:45
推 jamesonly: 我自己還會額外加ATP>< 怕buffer的沒用了 07/12 22:39